Técnicas de Obtención de Muestras de Orina

La correcta obtención de la muestra de orina es crucial para un análisis preciso. A continuación, se describen diferentes métodos:

Obtención de Orina al Acecho

Esta técnica es una alternativa viable donde un familiar o cuidador espera a que el paciente comience a orinar y recoge la muestra directamente en un frasco estéril. Requiere paciencia y un entorno adecuado.

• Ventajas: Evita procedimientos invasivos.
• Desventajas: Requiere tiempo y cooperación del paciente.

Punción Suprapúbica

Este procedimiento, realizado por un profesional experimentado, consiste en introducir una jeringa con aguja (No. 21) dos dedos por encima de la sínfisis del pubis para obtener una muestra aséptica.

• Ventajas: Muestra estéril, ideal para casos complejos.
• Desventajas: Invasivo, requiere personal capacitado.

Cateterización

La cateterización implica la obtención de orina a través de un catéter. Existe el riesgo de introducir bacterias desde la uretra hacia la vejiga, causando una infección iatrogénica.

• Ventajas: Útil en pacientes que no pueden orinar espontáneamente.
• Desventajas: Riesgo de infección.

Obtención en Pacientes Cateterizados: En pacientes hospitalizados o con hipertrofia prostática (u otras causas) que tienen un catéter de Foley, se desinfecta una zona del catéter y se obtiene la muestra con jeringa y aguja.

Envase, Identificación y Transporte de la Muestra

Envase

• El envase debe ser estéril. Los envases de vidrio deben ser esterilizados por el laboratorio y tener tapa a prueba de fugas.
• Se recomienda el uso de envases de plástico esterilizados comerciales, que son de bajo costo y evitan problemas de reutilización o contaminación.

Identificación

El laboratorio debe contar con la información mínima necesaria para procesar la muestra. Esto incluye, pero no se limita a: nombre del paciente, fecha y hora de recolección, y método de obtención.

Transporte

• Las muestras no deben permanecer más de dos horas a temperatura ambiente, desde la recolección hasta la llegada al laboratorio.
• Todas las muestras deben conservarse refrigeradas entre 2 y 8°C desde su emisión.
• Las muestras refrigeradas pueden conservarse hasta 24 horas, pero se recomienda sembrarlas lo antes posible.

Criterios de Rechazo de Muestras

Se deben rechazar las muestras que presenten las siguientes características:

• Muestras de orina visiblemente contaminadas con heces.
• Muestras de orina conservadas durante más de dos horas a temperatura ambiente.
• Muestras con identificación incorrecta o insuficiente.

Examen Físico y Químico de la Orina

Aspecto

El aspecto de la orina puede variar: transparente, ligeramente turbio, turbio o hemático (con sangre).

Color

El color puede verse afectado por:

• Medicamentos: La fenazopiridina (Pyridium), un analgésico urinario, da un color característico a la orina. Es importante destacar que este medicamento no tiene efecto antibacteriano a menos que se combine con un antibiótico.
• Alimentos: Ciertos alimentos, como la remolacha, pueden alterar el color de la orina.
• Condiciones médicas: Diversas patologías pueden influir en el color de la orina.

Presencia de Nitritos en Orina

• Las enterobacterias pueden reducir el nitrato a nitrito, detectable mediante una tira diagnóstica. Este es un procedimiento rápido incluido en el examen completo de orina.
• Los falsos negativos son comunes (bacterias que no reducen nitratos), pero los falsos positivos son raros.

Examen del Sedimento Urinario

Este proceso debe ser estandarizado para obtener resultados reproducibles y confiables. Las discrepancias con el examen completo de orina pueden deberse a diferencias en los métodos de obtención de la muestra o a variaciones en el volumen y la velocidad de centrifugación.

Procedimiento

1. Obtener orina de forma aséptica.
2. Utilizar un volumen de 5 a 7 mL.
3. Centrifugar durante 5 minutos a 3000 rpm.
4. Observar al microscopio a 400 aumentos.

Elementos a Buscar y Cuantificar

• Células epiteliales: Cantidad y asociación con bacterias.
• Leucocitos: Número y presencia de aglutinación. Un valor de referencia es <5 leucocitos por campo (400x). Considerar que 1 leucocito equivale a 5-10 leucocitos/mL de orina.
• Cilindros: Granulosos, hialinos, hemáticos o leucocitarios.
• Cristales: Oxalato de calcio, fosfato amónico magnésico, etc.
• Hematíes: Presencia y cantidad.
• Otros elementos: Espermatozoides, etc.
• Bacterias: Pueden indicar infección o contaminación vaginal.

Coloración de Gram

La presencia de una bacteria por campo de inmersión en orina sin centrifugar es equivalente a un cultivo con 10⁵ bacterias/mL. Sin embargo, pueden existir infecciones con recuentos menores.

Cultivos de Orina (Urocultivo)

Se utilizan medios de cultivo que favorecen el crecimiento de bacterias causantes de infecciones urinarias, como agar sangre, agar MacConkey, agar CLED o Brolacin. Algunos laboratorios usan agar manitol salado, agar EMB o agar sangre azida de sodio. Se describe el método con asa calibrada.

Procedimiento de Siembra

1. Introducir el asa de cultivo calibrada (1 o 5 μL) perpendicularmente en la orina.
2. Sembrar en un cuadrante de la placa de agar MacConkey, siguiendo un esquema de siembra adecuado.
3. Repetir el procedimiento para sembrar un cuadrante con agar sangre, realizando una estría longitudinal y luego estrías transversales para una distribución óptima.
4. Determinar la presencia de sustancias antibacterianas residuales.
5. Incubar las placas a 35°C durante 18 horas.

Identificación y Recuento de Colonias

Examen de los Cultivos

Después de la incubación:

1. Realizar el recuento de colonias.
2. Identificar los cultivos.
3. Realizar el antibiograma si corresponde.
4. Conservar el sedimento durante 24 horas.